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Western Blot(蛋白质印迹法)是一种广泛应用于分子生物学、生物化学和医学等领域的实验技术,用于检测和分析蛋白质。**一、原理**1. 蛋白质电泳分离 - 首先基于蛋白质的分子量大小或电荷等特性,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)对蛋白质样品进行分离。通常采用十二烷基硫酸钠 - 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS - PA
400-6863-880 立即咨询Western Blot(蛋白质印迹法)是一种广泛应用于分子生物学、生物化学和医学等领域的实验技术,用于检测和分析蛋白质。 **一、原理**
1. 蛋白质电泳分离
- 首先基于蛋白质的分子量大小或电荷等特性,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)对蛋白质样品进行分离。通常采用十二烷基硫酸钠 - 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS - PAGE),SDS是一种阴离子去污剂,它能与蛋白质结合,使蛋白质带上大量的负电荷,并且这些负电荷的量几乎与蛋白质的分子量成正比。这样,在电场的作用下,蛋白质就会根据其分子量大小在凝胶中迁移,分子量小的蛋白质迁移速度快,分子量大的蛋白质迁移速度慢,从而实现分离。
2. 蛋白质转移
- 分离后的蛋白质需要从凝胶转移到一种固相支持物(如硝酸纤维素膜或PVDF膜)上。这一过程通常是通过电转印来实现的,在电场的作用下,蛋白质从凝胶中迁移到膜上,并且能够保持其在凝胶中的相对位置和分布。膜对于蛋白质有较强的吸附能力,这样就为后续的检测提供了一个稳定的平台。
3. 抗原 - 抗体反应
- 转移到膜上的蛋白质可以与特异性的抗体进行反应。首先用封闭液(如含有脱脂奶粉或牛血清白蛋白的溶液)处理膜,以封闭膜上非特异性的蛋白质结合位点,减少非特异性背景信号。然后加入一抗(针对目标蛋白质的抗体),一抗会与膜上相应的目标蛋白质特异性结合。接着加入二抗(针对一抗的抗体,并且二抗通常带有标记,如辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶标记),二抗与一抗结合,通过二抗上的标记来进行检测。
4. 检测
- 根据二抗上的标记,可以采用不同的检测方法。如果是酶标记的二抗,可以通过加入相应的底物,酶催化底物发生化学反应,产生颜色变化、化学发光或荧光信号。例如,辣根过氧化物酶标记的二抗可以与化学发光底物反应,产生可被X光胶片或化学发光成像仪检测的信号。这些信号的强度与目标蛋白质的含量相对应,从而可以进行定量或定性分析。
**二、技术流程**
1. 样品制备
- 根据研究目的和样本类型(如细胞、组织或体液),选择合适的蛋白质提取方法。通常需要使用含有蛋白酶抑制剂的裂解缓冲液来裂解细胞或组织,以释放蛋白质。然后通过离心等方法去除细胞碎片等杂质,收集含有蛋白质的上清液。可以采用Bradford法或BCA法等对蛋白质浓度进行测定,以便后续准确地上样。
2. 凝胶电泳
- 根据目标蛋白质的分子量范围,选择合适的凝胶浓度来制备SDS - PAGE凝胶。将蛋白质样品与上样缓冲液(通常含有SDS、甘油、溴酚蓝等)混合,然后将样品加入到凝胶的加样孔中。在电泳缓冲液中进行电泳,一般在恒压条件下进行,例如,对于小型凝胶,可在80 - 120V下电泳,直到溴酚蓝指示剂迁移到凝胶底部。
3. 转膜
- 电泳结束后,需要将凝胶中的蛋白质转移到膜上。将凝胶、膜和滤纸等材料组装成“三明治”结构,放入转印装置中,在转印缓冲液中进行电转印。转印的条件(如电压、电流和时间)根据蛋白质的大小和膜的类型等因素来确定。例如,对于小分子蛋白质,转印时间可以相对较短,而对于大分子蛋白质,可能需要较长的转印时间和较高的电压。
4. 封闭
- 转膜完成后,用封闭液处理膜,一般在室温下振荡孵育1 - 2小时,或者在4℃过夜。封闭液的种类和浓度也需要根据实验情况进行调整,常用的封闭液有5%脱脂奶粉或3% - 5%牛血清白蛋白的TBST缓冲液(含有Tris - HCl、NaCl和Tween - 20)。
5. 一抗孵育
- 将膜放入含有一抗的溶液中,在合适的温度下(如4℃过夜或室温下2 - 3小时)振荡孵育。一抗的浓度需要根据抗体的特异性和亲和力等因素来确定,一般通过预实验来优化。孵育结束后,用TBST缓冲液充分洗涤膜,以去除未结合的一抗,通常洗涤3 - 5次,每次5 - 10分钟。
6. 二抗孵育
- 加入标记的二抗溶液,在室温下振荡孵育1 - 2小时。二抗的标记类型(如酶标记、荧光标记)决定了后续的检测方法。同样,用TBST缓冲液充分洗涤膜,去除未结合的二抗。
7. 检测
- 如果是酶标记的二抗,可以通过加入相应的底物进行显色或化学发光反应。对于显色反应,可以直接观察到颜色变化;对于化学发光反应,需要将膜放入化学发光成像仪中检测发光信号,或者用X光胶片曝光来记录信号。如果是荧光标记的二抗,可以使用荧光成像仪直接检测荧光信号。根据信号的强度和位置,可以判断目标蛋白质的存在与否以及相对含量。
**三、应用领域**
1. 蛋白质表达水平检测
- 在研究基因表达的最终产物——蛋白质时,Western Blot可以检测特定蛋白质在不同细胞、组织或不同生理/病理条件下的表达水平变化。例如,在研究肿瘤发生机制时,可以检测肿瘤组织和正常组织中相关癌蛋白的表达差异,为癌症的诊断和治疗提供依据。
2. 蛋白质分子量测定
- 通过与已知分子量的标准蛋白质一起电泳,根据目标蛋白质在凝胶中的迁移位置,可以估算其分子量。这对于鉴定新发现的蛋白质或者验证蛋白质的完整性非常有帮助。
3. 蛋白质 - 蛋白质相互作用研究
- 可以用于验证蛋白质之间是否存在相互作用。例如,通过免疫共沉淀(IP)结合Western Blot,可以先利用一种抗体沉淀与之相互作用的蛋白质复合物,然后用Western Blot检测复合物中其他蛋白质的存在,从而确定蛋白质之间的相互作用关系。
4. 信号转导研究
- 在细胞信号转导过程中,许多蛋白质会发生磷酸化、乙酰化等修饰,这些修饰会改变蛋白质的活性和功能。Western Blot可以检测这些修饰后的蛋白质。例如,通过使用针对磷酸化特定氨基酸残基的抗体,可以检测信号通路中激酶对底物蛋白的磷酸化状态,从而研究信号转导机制。
**四、优势与局限性**
1. 优势
- 特异性高:基于抗原 - 抗体的特异性结合,能够准确地检测目标蛋白质,即使在复杂的蛋白质混合物中也能很好地识别。例如,在细胞裂解液中可以特异性地检测到低丰度的目标蛋白。
- 半定量分析:通过比较目标蛋白质条带的信号强度与内参蛋白质(如β - 肌动蛋白或甘油醛 - 3 - 磷酸脱氢酶)的信号强度,可以对目标蛋白质进行半定量分析,了解其相对表达水平的变化。
- 提供分子量信息:在同一凝胶电泳中,通过与标准蛋白质分子量标记物对比,可以确定目标蛋白质的分子量,这对于蛋白质的鉴定和验证很有帮助。
- 多功能性:可以结合不同的标记和检测方法,如化学发光、荧光和显色等,适应不同的实验需求和条件。
2. 局限性
- 操作复杂:整个实验过程包括多个步骤,如电泳、转膜、抗体孵育和检测等,每个步骤都需要严格控制条件,操作不当很容易导致实验失败。
- 定量准确性有限:虽然可以进行半定量分析,但由于蛋白质转移效率、抗体亲和力和检测信号的线性范围等因素的影响,其定量准确性不如一些专门的定量蛋白质分析方法,如质谱法。
- 通量较低:每次实验一般只能检测有限的几种蛋白质,不适合大规模的蛋白质筛选。与一些高通量的蛋白质检测技术(如蛋白质芯片)相比,效率较低。
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